Организация работы в стерилизационной. подготовка и стерилизация режущих, оптических, общехирургических инструментов

Главная / Фундамент

Для выполнения оперативных вмешательств имеется большое количество разнообразных инструментов (скальпели, ножницы, иглы и иглодержатели, зажимы, крючки, ранорасширители, зонды, катетеры и др., включая сложную медицинскую аппаратуру). Инструменты, использованные во время операции, перевязок и других манипуляций, нуждаются в специальной предстерилизационной очистке для удаления белковых, жировых и других загрязнений, а также лекарственных препаратов. Особенно тщательно обработка проводится при загрязнении инструментов гноем, кишечным содержимым. Такие инструменты должны еще до предстерилизационной очистки дезинфицироваться химическими веществами: 6% перекисью водорода с 0,5% раствором синтетических моющих средств (экспозиция 30 минут), 0,1% надуксусной кислотой (экспозиция 15 минут), 2,4% раствором первомура (надмуравьиная кислота с перекисью водорода), тройным раствором (карболовая кислота 3 г, карбонат натрия 15 г, формалин 20 г, вода 1л) в течение 45 минут.

Предстерилизационная очистка слагается из 6 этапов: 1) ополаскивание теплой проточной водой в течение 1 минуты; 2) замачивание в течение 15 минут в теплом растворе, содержащем 1-2% перекиси водорода и 0,5% синтетических моющих средств, 3) обработка инструментов в моющем растворе в течение 1 минуты щеткой, ершом, тампоном, обращая внимание на труднодоступные места, моющий раствор меняют на чистый при появлении признаков загрязнения, крови; 4) ополаскивание проточной водой в течение 5 минут; 5) ополаскивание дистиллированной водой в течение 1 минуты; 6) сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 80-85°.
Таким образом, предстерилизационная очистка использованного инструмента занимает около 25 минут, не считая времени на просушку, поскольку, если инструменты стерилизуют сразу после очистки, то просушку производить нет надобности. Скальпели обрабатывают отдельно, чтобы не повредить лезвие. Качество обработки на присутствие даже следов крови проверяют с помощью бензидиновой пробы, основанной на окислении бензидина перекисью водорода. При наличии следов крови на инструментах или шприцах бесцветный реактив приобретает сине-зеленую окраску.

Стерилизовать хирургические инструменты лучше всего автоклавированием, разместив их на подносах, завернутых простыней, или упаковав в два мешка с завязками по типу кисета (минимальная экспозиция 40 минут при давлении 1,5 атмосферы). Можно стерилизовать в воздушных сухожаровых стерилизаторах в течение 60 минут, но инструменты нельзя заворачивать в материю, бумагу, так как они обуглятся или сгорят при температуре 170°, которая бывает в сухожаровых стерилизаторах. Поэтому инструменты раскладывают в металлических пеналах или коробках с открытыми крышками с тем, чтобы температура достигла нужных 170-180°. Для относительно быстрой и достаточно простой стерилизации инструментов используют стерилизаторы-кипятильники. Сетку с инструментами опускают в стерилизатор и кипятят в течение 25-30 минут в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия (соды) или просто в дистиллированной воде. Сода способствует разрушению спор микробов, жиров и белков, предотвращает коррозию металлов. Если инструменты не прошли предстерилизационной очистки, то кипячение проводится 2-3 раза по 45 минут со сменой воды или раствора соды. Полная стерилизация шприцев достигается через 45 минут (цилиндры и поршни обертывают марлей, в иглы вставляют мандрены во избежание закупорки их просвета). При возможном загрязнении шприцев гнилостной и анаэробной микрофлорой или вирусами гепатита (болезнь Боткина или инфекционная желтуха) необходимо 2-3-кратное кипячение в отдельном стерилизаторе.
Стерилизация сложной хирургической аппаратуры (оптические системы, детали наркозного аппарата и др.), изделий из резины и синтетических материалов возможна окисью этилена или смесью ее с бромистым метилом из расчета 1:2,5 в специальных газовых стерилизаторах. Применяют также стерилизацию в пароформалиновых камерах парами формалина: на дно плотно закрывающейся емкости кладут таблетки формалина или наливают 25-30 мл формалина(40% водный раствор формальдегида), в камеру подается пар. Возможна стерилизация путем обмывания в растворе окиси цианистой ртути (1:1000).
Хирургические инструменты можно обрабатывать путем холодной стерилизации, которая проводится с использованием производных фенола, формалина, дихлорида ртути, спиртов, красителей, галогенов и других химических веществ. Высокие концентрации указанных препаратов обладают не только бактерицидным, но и спороцидным действием. В частности, используется тройной раствор (экспозиция 45 минут, споры гибнут через 1,5 часа); ртутный препарат диоцид в растворе 1:1000 и 1:5000 (экспозиция 45 минут); 1% раствор бриллиантового зеленого (споры гибнут через 30 минут); генциан фиолетовый в количестве 1 г и 2 г формальдегида, растворенные в 100 мл 96% этилового спирта (споры уничтожаются через 2-4 часа); 2,5% раствор гобитона, где действующим началом является 20% глюконат хлоргексидина (экспозиция 30 минут). После применения любого из указанных способов холодной стерилизации инструменты погружают в 70% или 96% этиловый спирт для длительного хранения в стерильном состоянии. Для стерилизации оптических систем, синтетических и пластмассовых изделий применяют оксицианид ртути (1:1000), препарат не повреждает линзы и не растворяет клей (экспозиция 20 минут). Режущие и колющие инструменты (скальпели, иглы) стерилизуют погружением на 2 часа в 96% этиловый спирт или тройной раствор.
В исключительных случаях без предстерилизационной обработки инструментарий, загрязненный гноем, стерилизуют лизолом (фенольный препарат), 35% раствором зеленого калийного мыла, 5% раствором хлорамина Б, 1% раствором сульфохлорактина, 0,5% раствором хлорцина.
Как крайнюю меру в исключительных случаях для стерилизации применяют обжигание инструментария, предварительно залитого 96% этиловым спиртом, а также прокаливание на пламени. Но эти способы ненадежны при сложной конфигурации инструментов, их большого размера или объема.

Существуют холодные и горячие способы стерилизации инструментов. К горячим относятся: стерилизация кипячением в воде, фламбирование и др. К холодным способам относится стерилизация в тройном растворе Каретникова.

Стерилизация кипячением в воде. Предложен Давидсоном и Кумером в 1881 году. Проводится в стерилизаторах. Вымытые инструменты погружаются в предварительно прокипяченую (10 минут) воду для удаления углекислоты и кислорода и кипятят 30 минут. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, то его вытирают. Смазанные вазелином иглы протирают и промывают эфиром или спиртом. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли с тем, чтобы они не затерялись, если инструментов много.

С целью повышения эффекта стерилизации инструменты кипятят в 3% растворе двууглекислой соды, или в 0,25% растворе едкого натра. По окончании стерилизации инструменты тотчас извлекают с решеткой стерилизатора, открывая крышку так, чтобы пар выходил из стерилизатора, не обжигая при этом руки и лицо. При необходимости повторной стерилизации воду не сливают.

Инструменты с решетки стерилизатора раскладывают на инструментальном столике, покрытым в три ряда стерильной простыней или полотенцем. Раскладку инструментов лучше проводить щипцами Микулича или корнцангом. При этом строго соблюдается определенный порядок -- однотипные инструменты на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которой были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты покрывают стерильной простыней или полотенцем.

Инъекционные иглы и шприцы стерилизуют в отдельном стерилизаторе и только в воде, поскольку наличие щелочей и др. (желательно дистиллированной) дезинфектантов может привести к инактивации лекарственных средств (например, щелочь инактивирует новокаин). При этом иглы и шприцы предварительно тщательно моют проточной водой и помещают в холодную воду в разобранном виде. Иглы стерилизуют с мандренами и помещают в стерилизатор через 10 минут после того, как в нем закипит вода.

Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием), Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и зажигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться.

Этот способ дорогой и небезопасный. Кроме того, длительное обжигание отпускает сталь, портит нержавеющие покрытия, тупит режущие части инструментов. Поэтому фламбирование используется лишь при оказании экстренной хирургической помощи, а также для стерилизации эмалированной посуды, когда за недостатком времени невозможны другие способы стерилизации.

Холодные способы стерилизации имеют большое практическое значение, поскольку позволяют обеспечить стерильность хирургических инструментов даже в полевых условиях, где нет возможности применить надежную тепловую обработку.

Стерилизация инструментов в тройном растворе Каретникова. Метод предложен в 1938 году. Раствор состоит из 20 г формалина, 15 г соды, 3 г карболовой кислоты и 1 литра дистиллированной воды. Продолжительность стерилизации 30 минут. Способ обеспечивает надежную стерилизацию инструментов, не портит их, предохраняет от ржавчины. При продолжительном хранении в банках с притертыми пробками раствор не теряет своих бактерицидных свойств и остается прозрачным.

Аналогичным образом можно стерилизовать инструменты в растворе бактерицида 1:3000 с содой 1% - 10 минут: в риваноле (этакридина лактат) 1:500 - 30 минут; в 1% спиртовом растворе бриллиантовой зелени - 15 минут.

Шприцы стерилизуют в растворе Китцлера, который состоит из: 3 г карболовой кислоты, 15 г буры и 20 г формалина на 1 литр воды. Продолжительность стерилизации -- 30 минут.

При гнойных операциях инструменты, бывшие в употреблении, вытирают влажной марлей (руками в перчатках), затем стерилизуют в течение 10 минут в 2% растворе углекислого натрия с добавлением 0,5% раствора лизола, вытирают сухим полотенцем и высушивают. При операциях, связанных с анаэробными процессами, а также в случае загрязнения инструментов землей их погружают на 10 минут в раствор лизола и после механической очистки стерилизуют в течение 30 минут в 0,25% растворе едкого натрия или в 2% растворе углекислой соды с прибавлением 0,5% лизола, после чего вытирают обычным порядком.

Хранение инструментов. Инъекционные иглы можно хранить в банках с притертой пробкой в жидкости Никифорова (спирт с эфиром поровну) или в растворе Китцлера. При этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшуюся на инструментах можно удалить с помощью мела с нашатырным спиртом в отношении 2:1 пли порошком водной окиси железа.

Инструменты необходимо хранить в чистом сухом помещении, инструментальных шкафах, всегда плотно закрытых. Во избежание появления ржавчины на инструментах желательно иметь в шкафах сосуды, наполненные наполовину хлористым кальцием, которые хорошо поглощают влагу из воздуха.

Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода. Редко употребляемые инструменты должны быть смазаны нейтральным жиром -- вазелином или натуральной олифой.

Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде. Для этого их заворачивают в марлю (чтобы не подгорели) и кипятят в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина. Берут соответствующей величины стеклянный сосуд с герметической крышкой. На дно сосуда наливают немного формалина. Затем подвешивают к крышке пли укрепляют на специальной подставке катетеры (бужи, другие резиновые инструменты) и плотно закрывают крышку. Продолжительность стерилизации -- 24 часа. Резиновые изделия, бывшие в употреблении, механически очищают перед каждой стерилизацией теплой водой с мылом и мягкими щетками или куском марли.

Резиновые катетеры и бужи можно стерилизовать путем кипячения в 40% растворе хлористого натрия в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина, или в 0,1% водном или 0,1% спиртовом (спирт 70° или 96°) растворе декаметоксина (протирают салфеткой в течение 3 минут).

Стерилизация инструментов с оптикой, которую используют для эндоскопии, моют в воде с мылом и протирают салфеткой, смоченной 6% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором синтетического моющего средства (Рубленко М.В.. 1996).

Оптические инструменты можно стерилизовать в растворе фурацилина (1:5000) в течение 30-50 минут. Оптическая система протирается этиловым спиртом или 2,5% раствором гибитана (хлоргексидина биглкжоната).

При стерилизации инфузионных систем, шприцев-автоматов, что имеют в своем составе полимерные материалы, следует обращать особое внимание на узлы и элементы, которые вступают в непосредственный контакт с лечебным веществом. Предварительно эти места моют 3% раствором перекиси водорода с 0,5-1% раствором синтетического моющего средства или смесью равных частей 1% раствора натрия гидрокарбоната и I % раствора аммиака. Дальнейшая обработка предполагает погружение инструментов в раствор одного из нижеперечисленных антисептиков: 0,5-2,5% гибитана (хлогексидина биглюконата) (20-30 минут), 0,1% диоцида (30 минут), 6% перекиси водорода (6 часов), 4,8% первомура (15 минут), или 70° этилового спирта (2 часа). Все антисептические средства, кроме перекиси водорода после стерилизации смывают стерильной водой.

Этап 1 - предстерилизационная подготовка . Ее цель - тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.
Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты тщательно моют про точной водой щетками в отдельной раковине в течение 5 мин (инструменты, загрязненные кровью, моют сразу, не допуская высыхания крови) и затем на 15-20 мин замачивают в одном из специальных моющих растворов, подогретом до 50вС. Шприцы обрабатывают в разобранном виде.
Состав моющих растворов: раствор А - пергидроля 20 г, стирального порошка (типа «Новость», «Прогресс», «Астра» и др.) 5 г, воды 975 мл; раствор Б - 2,5% раствора перекиси водорода 200 мл, стирального порошка «Новость» 5 г, воды 795 мл.
После замачивания инструменты моют в том же растворе ершами, щетками (особенно тщательно обрабатывают замки, зубчики, насечки), затем в течение 5 мин ополаскивают теплой водой и в течение 1 мин прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты и шприцы помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 85 °С для высушивания, после чего они готовы к стерилизации.
Инструменты и шприцы, загрязненные гноем или кишечным содержимым, предварительно помешают в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щетками, ополаскивают проточной водой и опускают в один из моющих растворов, проводя дальнейшую обработку по описанной выше методике.
Инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией, замачивают на 1 ч в специальном растворе, состоящем из 6% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющего средства (стиральный порошок), затем моют щеткой в этом же растворе и кипятят 90 мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации так же, как неинфицированные инструменты. Через 1 сут (время для прорастания спор) их подвергают автоклавированию или кипячению (дробная стерилизация).
Пункционные, инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шприца теплой водой, а затем 1 % раствором натрия гидрокарбоната, канал иглы прочищают мандреном, промывают 0,5% раствором нашатырного спирта и проточной водой.

После этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия гидрокарбоната, а через 8-12 ч - повторно в дистиллированной в течение 40 мин и высушивают, после чего канал иглы просушивают путем продувания эфиром или спиртом с помощью шприца либо резиновой груши. Иглы, загрязненные гноем, тщательно моют, просвет их промывают проточной водой; затем помешают на 1 ч в 5% раствор лизола, дополнительно промывая лизолом канал с помощью шприца или резиновой груши, и подвергают такой же дальнейшей обработке, как не загрязненные гноем иглы.
Системы для трансфузии лекарственных веществ или крови требуют тщательной обработки для предупреждения посттрансфузионных реакций и осложнений. В современных условиях используют разовые системы для трансфузии, стерилизованные в заводских условиях. Систему многоразового использования сразу после переливания крови или лекарственного препарата разбирают - разъединяют стеклянные части, капельницу и резиновые трубки, тщательно промывают проточной водой, разминая пальцами резиновую трубку (для лучшего удаления остатков крови). Части системы опускают на 2 ч в подогретый до 60 °С специальный раствор, содержащий 1 % раствор натрия гидрокарбоната и 1% раствор нашатырного спирта. Затем части системы промывают проточной водой и кипятят в дистиллированной воде 30 мин, вновь промывают водой, разминая резиновые трубки, и повторно кипятят 20 мин в дистиллированной воде. После этого систему монтируют и упаковывают для стерилизации.
Этап 2 - укладка и подготовка к стерилизации. Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помешают в металлические коробки, укладывая их вертикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специальной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. В последнее время в основном применяются шприцы разового пользования, стерилизованные в заводских условиях.
Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных типичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для операций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заворачивают в простыню в виде пакета.
Цилиндр и поршень шприца укладывают отдельно в марлевые салфетки и заворачивают в кусок хлопчатобумажной ткани в виде пакета, который помещают в стерилизационную коробку (бикс). При массовой стерилизации шприцев в автоклавах (централизованная стерилизация) используют специальную укладку, сшитую из хлопчатобумажной ткани, с карманами. В карманы помещают шприцы в разобранном виде, радом - иглы и пинцет. В каждой укладке содержится до 5 шприцев. Укладки заворачивают в хлопчатобумажную пеленку в виде пакета и помещают в стерилизатор.
Сухие резиновые перчатки пересыпают тальком (снаружи и внутри), прокладывают марлевыми салфетками, попарно заворачивают в салфетку и укладывают в от дельный бикс.
Собранные системы для переливания крови проверяют на прочность резиновых трубок, плотность соединения их со стеклянными деталями и соответствие канюль павильонам иглы. Систему сворачивают в виде 2-3 колец, не допуская перегиба резиновых трубок, заворачивают в большую марлевую салфетку, затем - в вафельное полотенце и укладывают в биксы.
Этап III - стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 вС), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стерилизаторах (рис. 4). Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в металлических коробках (при снятых крышках) и включают подогрев. При открытой дверце доводят температуру до 80-85 °С и в течение 30 мин просушивают - удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят температуру до заданной (180 °С), поддерживая ее автоматичес ки, и стерилизуют в течение 60 мин. После отключения системы подогрева и сниже ния температуры до 70-50 °С открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15-20 мин (после полного охлаждения стерилизатора) камеру разгружают.
При работе с сухожаровым стерилизатором необходимо соблюдать меры безопасности: аппарат должен быть заземлен, по окончании стерилизации следует открывать дверцу шкафа только при снижении температуры до 70-50 °С. Запрещается пользоваться неисправным аппаратом.
Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если упаковки уложены в биксы, то их решетки должны быть открыты. Биксы или другие упаковки укладывают свободно, что бы пар распределялся равномерно.
Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм, что соответствует температуре 132,9 °С. Время начала стерилизации отсчитывают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (температура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячением применяется в небольших лечебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Используют стационарные или портативные электрические кипятильники, в которых можно стерилизовать инструменты, шприцы, иглы, предметы из стекла, резиновые дренажи, катетеры, перчатки.
В кипятильник наливают дистиллированную воду, для повышения температуры кипения воды и разрушения оболочки бактерий добавляют 20 г натрия гидрокарбоната на 1 л воды (2% раствор). На дно кипятильника укладывают тонкий простеганный слой из ваты с марлей, чтобы выпадающие соли в виде накипи оседали на нем, а не на инструментах.
Инструменты в разобранном виде укладывают на специальные сетки и опускают крючками на дно кипятильника, оставляя ручки крючков снаружи, и закрывают кипятильник крышкой. Время стерилизации - 40 мин с момента закипания воды. По окончании стерилизации сетку с инструментами подхватывают крючками, дают стечь воде и переносят на специальный столик, покрытый стерильной простыней, сложен ной в 4 слоя. Операционная сестра раскладывает инструменты на большом операционном столе.
Шприцы и иглы стерилизуют отдельно от инструментов, в разобранном виде (кипячением в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия), в течение 45 мин. Шприцы и иглы для спинномозговой пункции и внутривенных вливаний кипятят в дважды дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия.
Инструменты, шприцы и иглы, загрязненные гноем, каловыми массами, после специальной предварительной обработки стерилизуют кипячением в течение 90 мин в отдельном кипятильнике.
Инструменты, шприцы и иглы, применяемые у больных с газовой гангреной, под лежат тщательной обработке и последующей дробной стерилизации кипячением. Их кипятят в течение 1 ч, извлекают из кипятильника и оставляют при комнатной температуре на 12-24 ч (для прорастания спор), а затем повторно стерилизуют кипячением в течение 1 ч (дробная стерилизация).

В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов
ни одним из указанных способов, используют метод обжигания В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и поджигают спирт. Метод обжигания недостаточно надежен, пожаро- и взрывоопасен (наличие кислорода, паров наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго соблюдая меры пожар ной безопасности.
Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными методами затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. После предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих инструментов. Скальпели укладывают в отдельную сетку, их лезвия обертывают марлей и кипятят в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия в течение 10 мин, затем помешают в 96% этиловый спирт на 30 мин.
Этап IV - хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Бели материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут храниться в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

Стерилизация перчаток.

При любом способе обработки стерильность рук нарушается, особенно при длительных операциях, так как микробы могут выходить из пор, складок, волосяных мешочков, из потовых и сальных желез - «самоинфицирование». Поэтому после обработки по одному из перечисленных выше способов надевают стерильные резиновые перчатки. Перчатки стерилизуют различными способами. Надежную стерилизацию обеспечивает автоклавирование перчаток вместе с перевязочным материалом. Перчатки пересыпают снаружи и внутри тальком, заворачивают по одной в марлевую салфетку и закладывают в бикс для стерилизации. Можно стерилизовать перчатки кипячением в воде в течение 15 мин или погружать в раствор сулемы (1:1000) сроком на 1 ч.
Надетые перчатки протирают спиртом. Нельзя допускать попадания талька с поверхности перчаток в операционную рану, так как это ведет к образованию воспалительных гранулем. При повреждении, перчатки ее следует сразу же заменить, иначе «перчаточный сок» (пот) попадет в рану. После окончания операции перчатки тщательно моют теплой водой с мылом, снаружи и внутри для удаления крови, протирают и сушат. Если перчатки инфицированы гноем (перитонит, флегмона), то после мытья их опускают в дезинфицирующий раствор (лизол, сулема), извлекают, моют горячей водой с мылом, снова опускают в дезинфицирующий раствор на 30 мин, моют и кипятят 20 мин.
Целость перчаток проверяют перед стерилизацией. Обнаруженные отверстия заклеиваются небольшой резиновой заплатой при помощи клея. При стерилизации в автоклаве перчатки быстро приходят в негодность: теряют прочность и эластичность, легко рвутся и поэтому иногда лучше пользоваться холодной обработкой перчаток. Кроме сулемы, для этой цели можно использовать 2% раствор хлорамина, 0,5% спиртовой раствор формалина, йод в растворе спирта и глицерина (йода 2,5 г, спирта и глицерина по 4,0 мл). Для работы в перевязочной можно стерилизовать перчатки в растворе Синицына (борная кислота - 5 г, натрия карбонат - 75 г, формалин - 100 г, фенол - 16,5 г, дистиллированная вода - 5000 г) в течение 3 ч или в 2%-ном растворе хлорамина в течение 30 мин. При тщательной предварительной механической обработке перчаток все эти средства обеспечивают надежную стерилизацию. В исключительных случаях (массовая обработка раненых) - В одних перчатках можно произвести несколько операций (разумеется, если они не связаны с обработкой анаэробных, гнилостных или сильно загрязненных ран). После каждой операции перчатки обрабатывают, не снимая их с рук, марлей, смоченной Долевым раствором, затем моют в тазике руки в перчатках аммиачным раствором (способ Спасокукоцкого - Кочергина), выжирают насухо и обрабатывают спиртом.

41 . Стерилизация оптического инструментария.
Цистоскопы, уретроскопы, цистолитотрипторы и другие оптические инструменты тщательно очищаются сначала в собранном, а затем в разобранном виде. Лампочки из них не выворачивают. Металлические части инструментов кипятят в дистиллированной воде, эластические и оптические стерилизуют в парах формалина. При кипячении металлических частей оптических инструментов следует обращать внимание на то, чтобы они при кипячении не ударялись о дно стерилизатора. Этого легко избежать, если кипячение проводить на специально сделанных стеллажах. Этот стеллаж извлекается после тридцатиминутного кипячения вместе с частями инструмента, которые после высушивания помещаются в пароформалиновый шкафчик и там находятся до их использования.

Оптические части инструмента очищаются, моются в проточной воде с помощью губки и высушиваются на воздухе. После высушивания оптическая часть до окуляра (пластмассовой части) помещается в 95% раствор этилового спирта, где находится в течение часа. При подозрении на мочеполовой туберкулез у исследованного больного оптика вместо спирта на такое же время помещается в 5% раствор фенола.

Оптические инструменты можно стерилизовать и погружением всех частей, кроме ручки со шнуром, в раствор оксицианистой ртути (1:1000) на 20 мин. Оптические трубки погружаются в раствор до воронки окуляра. После цистоскопии больных с подозрением на туберкулез оптические инструменты должны стерилизоваться в растворе оксицианистой ртути не менее 30 мин.

Оптические инструменты можно стерилизовать и в пароформалиновых шкафчиках. Длительность стерилизации не менее 48 ч. После извлечения из камеры их погружают на 10-20 мин в раствор оксицианистой ртути (1:1000) или 95% раствор винного спирта.

Есть еще и вот такое.

Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.
При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс - двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).

42. Стерилизация шелка.

Шелк применяют плетеный и крученый. Плетеный шелк прочнее, но значительно дороже. Толщина нитей определяется номерами (от № 000 до № 16).

Стерилизуют шелк чаще всего по методу Кохера:

1. Мотки шелка моют 2-3 раза в теплой воде с мылом и высушивают стерильным полотенцем.

2. Стерильными руками шелк не туго наматывают на стеклянные катушки или предметные стекла с закругленными краями и опускают на 12-24 часа (в зависимости от толщины) в эфир для обезжиривания.

3. Из банки с эфиром стерильными инструментами мотки шелка переносят на такое же время в 70° спирт.

4. Шелк кипятят в растворе сулемы 1: 1000 в течение 10 минут. Кипячение производят в заранее прокипяченной эмалированной кастрюле.

5. Помыв руки и надев стерильный халат, шелк переносят из раствора сулемы в банку с притертой пробкой, наполненную 96° спиртом, где шелк и хранят до употребления.

Применять готовый шелк можно лишь после посева на стерильность. При отсутствии шелка его заменяют льняными или хлопчатобумажными нитями. Они стерилизуются так же, как и шелк.

Часто применяют модификации способа Кохера.
1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№ 0-4 в течение 15 мин., № 5-8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Стерилизация капрона.

Капрон можно стерилизовать кипячением в течение 20 минут. Стерилизация лавсана. Лавсановые нити могут стерилизоваться автоклавированием, кипячением, а также раствором диоцида (1:1000-1:5000). Большинство видов современного шовного материала стерилизуется в заводских условиях гамма-облучением. Контроль за стерильностью шовного материала осуществляется бактериологическим методом.

Есть такой вариант. Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в том числе и в сулеме.

Стерилизация кетгута.

Кетгут представляет собой нити различной толщины, изготовляемые из серозного и мышечного слоя овечьих кишок. В зависимости от толщины кетгут определяют по номерам от № 000 до № 8. В тканях кетгут полностью рассасывается через 2-3 недели. Для удлинения сроков рассасывания в настоящее время применяют хромированный и формалиновый кетгут. В связи с возможностью значительной бактериальной загрязненности кетгута его стерилизация требует особой тщательности. Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала - кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12-24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№ 0-1 на 30 сек., № 2-5 на 1 мин., № 6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6-7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке - 40 г, в 5-литровой банке - 60 г). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простерилизованным № 0-1 - через 3 суток, № 2-4 - через 4 суток, № 5-6 - через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.
Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г чистого йода и 10 г калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.
Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г йода и 10 г калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7-10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г калия йодида и 10 г чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8-10 суток после выдерживания его в течение 12-24 час. в эфире, а затем на 4- 6 суток - в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7-10 суток.

Стерилизация кетгута в спиртовом люголевском растворе.

1. Мотки кетгута погружают в эфир на 12-24 часа.

2. Эфир сливают. Кетгут заливают 2 раза через 8 суток спиртовым люголевским раствором (спирта 96° 1000 мл, йодистого калия 10 г, чистого йода 10 г).

Кетгут подвергают бактериологической проверке, а затем хранят в люголевском растворе.

Стерилизация кетгута в водном люголевском растворе.

1. Мотки сухого кетгута погружают в эфир на 12-24 часа.

2. Эфир сливают и кетгут заливают 2 раза через 8 суток водным люголевским раствором (дистиллированной воды 1000 мл, йодистого калия 20 г, чистого йода 10 г).

3. Кетгут заливают 96° спиртом на 4-6 суток. Берут посев на стерильность.

4. Хранят готовый кетгут в 96° спирте.

В настоящее время ветеринарные специалисты все чаще пользуются стерильными одноразовыми пластиковыми шприцами и иглами. Однако ветврач должен знать, как при необходимости простерилизоватъ инъекционные шприцы и иглы.

Существуют холодные и горячие способы стерилизации инструментов.

Горячие способы стерилизации

К горячим способам относятся: стерилизация кипячением в воде, стерилизация фломбированием и др.

Стерилизация кипячением в воде . Предложена Давидсоном и Кумером в 1881 г. Кипятят инструменты в стерилизаторах. Вымытые инструменты погружают в предварительно прокипяченную в течение (10 мин), для удаления диоксида углерода и кислорода, воду, кипятят 30 мин. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, смазку стирают. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли с тем, чтобы они не затерялись, если инструментов много.

С целью повысить эффект стерилизации инструменты кипятят в 3%-ном растворе бикарбоната натрия (двууглекислой соды) или в 0,25%-ном растворе гидроксида натрия. По окончании стерилизации инструменты тотчас извлекают с решеткой стерилизатора, открывая крышку так, чтобы пар выходил из стерилизатора. При необходимости повторной стерилизации воду не сливают.

Инструменты с решетки стерилизатора раскладывают на инструментальном столике, покрытом сложенной в три слоя стерильной простыней или стерильным полотенцем. Раскладывают инструменты щипцами Микулича или корнцангом. При этом необходимо строго соблюдать определенный порядок - однотипные инструменты на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которую были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты прикрывают стерильной простыней или полотенцем.

Инъекционные иглы и шприцы стерилизуют в отдельном стерилизаторе и только в воде (желательно дистиллированной), поскольку наличие щелочей и других дезинфектантов может привести к инактивации лекарственных средств (например, щелочь инактивирует новокаин). При этом шприцы предварительно тщательно моют проточной водой и помещают в холодную воду в разобранном виде. Смазанные вазелином иглы протирают и промывают эфиром или спиртом. Иглы стерилизуют с мандренами и помещают в стерилизатор через 10 мин после того, как в нем закипит вода.

Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием) . Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и поджигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться. Этот способ дорогостоящий и небезопасный. Кроме того, длительное обжигание отпускает сталь, портит нержавеющие покрытия, тупит режущие части инструментов.

Холодные способы стерилизации

К холодным способам относится стерилизация в тройном растворе Каретникова и в растворе Китцлера.

Стерилизация инструментов в тройном растворе Каретникова . Метод предложен в 1938 г. Раствор состоит из 20 г формалина, 15 г соды, 3 г карболовой кислоты и 1 л дистиллированной воды. Продолжительность стерилизации 30 мин. Способ обеспечивает надежную стерилизацию инструментов, не портит их, предохраняет от ржавчины. При продолжительном хранении в банках с притертыми пробками раствор не теряет своих бактерицидных свойств и остается прозрачным.

Аналогичным образом можно стерилизовать инструменты в растворе бактерицида Збарского 1:3000 с содой 1%-ном - 10 мин: в риваноле (этакридина лактат) 1:500 30 мин; в 1%-ном спиртовом растворе бриллиантового зеленого 15 мин. В настоящее время предложен способ стерилизации инструментов с использованием лизафина, лизоформина 3000.

Стерилизация в растворе Китцлера. Шприцы стерилизуют в растворе Китцлера, который состоит: из 3 г карболовой кислоты, 15 г буры и 20 г формалина на 1 л воды. Продолжительность стерилизации 30 мин.

Обработка использованных инструментов

При гнойных операциях инструменты, бывшие в употреблении, вытирают влажной марлей (руками в перчатках), затем стерилизуют в течение 10 мин в 2%-ном растворе карбоната натрия с добавлением 0,5%-ного раствора лизола, вытирают сухим полотенцем и высушивают. При операциях по поводу анаэробных процессов, а также в случае загрязнения инструментов землей их погружают на 10 мин в раствор лизола и после механической очистки стерилизуют в течение 30 мин в 0,25%-ном растворе гидроксида натрия или в 2%-ном растворе карбоната натрия с прибавлением 0,5 % лизола, после чего вытирают обычным порядком.

Хранение инструментов

Инъекционные иглы можно хранить в банках с притертой пробкой в жидкости Никифорова (спирт с эфиром 1:1) или в растворе Китцлера. При этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшиеся на инструментах, можно удалить, протерев их смесью мела с нашатырным спиртом в соотношении 2: 1 или порошком водного оксида железа.

Инструменты необходимо хранить в чистом сухом помещении, инструментальных шкафах, которые должны быть всегда плотно закрыты. Во избежание появления ржавчины на инструментах желательно иметь в шкафах сосуды, наполненные наполовину хлоридом кальция, которые хорошо поглощают влагу из воздуха.

Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода. Редко употребляемые инструменты должны быть смазаны нейтральным жиром - вазелином или натуральной олифой.

Стерилизация предметов из резины

Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде. Для этого их заворачивают в марлю (чтобы не подгорели) и кипятят в течение 30 мин. Можно применить холодный способ стерилизации в парах формалина. Для этого на дно в соответствующей величины стеклянного сосуда с герметической крышкой наливают немного формалина. Затем подвешивают к крышке или укрепляют на специальной подставке катетеры (бужи, другие резиновые инструменты) и плотно закрывают крышку. Продолжительность стерилизации 24 ч.

Резиновые изделия, бывшие в употреблении, перед каждой стерилизацией механически очищают теплой водой с мылом и мягкими щетками или куском марли. Резиновые катетеры и бужи можно стерилизовать путем кипячения в 40%-ном растворе хлорида натрия в течение 30 мин, или холодным способом в парах формалина, или в течение 3 мин, протирая их салфеткой, смоченной в 0,1%-ном водном или 0,1%-ном спиртовом (спирт 70%-ный или 96%-ный) растворе декаметоксина.

Стерилизация инструментов с оптикой

При стерилизации инструменты с оптикой, которую используют для эндоскопии, моют в воде с мылом и протирают салфеткой, смоченной 6%-ным раствором перекиси водорода с 0,5%-ным раствором синтетического моющего средства (М. В. Рубленко, 1996).

Оптические инструменты можно стерилизовать в растворе фурацилина (1:5000) в течение 30…50 мин. Оптическую систему протирают этиловым спиртом или 2,5%-ным раствором гибитана (хлоргексидина биглюконата).

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter .